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	<title>云生物 &#187; Questions</title>
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	<description>生物信息学(Bioinformatics)的快速问答系统</description>
	<lastBuildDate>Sat, 04 Feb 2012 05:51:27 +0000</lastBuildDate>
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		<title>小RNA测序数据中小于多少copy number的reads被认为是测序误差造成的，所以舍弃呢？</title>
		<link>http://yunbio.com/1840</link>
		<comments>http://yunbio.com/1840#comments</comments>
		<pubDate>Sat, 04 Feb 2012 05:51:27 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Paulluke</dc:creator>
				<category><![CDATA[Questions]]></category>
		<category><![CDATA[小RNA copy number]]></category>

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		<description><![CDATA[大家好： &#160; &#160; 把测序数据uniq之后会得到每一条read对应重复了多少次。有paper说重复10次以下的read被认为是测序误差造成，要舍去。我的数据是拟南芥小RNA测序数据，里面有六分之一的reads其copy number都是一，这样舍去是否是太多了呢？ &#160; &#160; 谢谢。]]></description>
			<content:encoded><![CDATA[<p>
	大家好：</p>
<p>
	&nbsp; &nbsp; 把测序数据uniq之后会得到每一条read对应重复了多少次。有paper说重复10次以下的read被认为是测序误差造成，要舍去。我的数据是拟南芥小RNA测序数据，里面有六分之一的reads其copy number都是一，这样舍去是否是太多了呢？</p>
<p>
	&nbsp; &nbsp; 谢谢。</p>
<div class="similarity"></div><!-- Tag -->]]></content:encoded>
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		</item>
		<item>
		<title>Rfam中tRNA没有物种信息怎么办？</title>
		<link>http://yunbio.com/1838</link>
		<comments>http://yunbio.com/1838#comments</comments>
		<pubDate>Fri, 03 Feb 2012 02:36:35 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Paulluke</dc:creator>
				<category><![CDATA[Questions]]></category>
		<category><![CDATA[rfam]]></category>
		<category><![CDATA[tRNA]]></category>
		<category><![CDATA[比对]]></category>

		<guid isPermaLink="false">http://yunbio.com/1838</guid>
		<description><![CDATA[&#160; &#160; 大家好。我现在想用拟南芥的测序数据比对Rfam中structural ncRNA，但是tRNA没有物种信息，我是直接用里面的9万多条tRNA序列拿来比对吗？tRNA虽然保守，可以这么做吗？我想是否应该有针对拟南芥的tRNA序列呢？ 有点相关的问题ncRNA定位 (0.500)批量提取序列 (0.500)]]></description>
			<content:encoded><![CDATA[<p>
	&nbsp; &nbsp; 大家好。我现在想用拟南芥的测序数据<span class='wp_keywordlink_affiliate'><a href="http://yunbio.com/tag/%e6%af%94%e5%af%b9" title="查看 比对 中的全部文章" target="_blank">比对</a></span>Rfam中structural ncRNA，但是<span class='wp_keywordlink_affiliate'><a href="http://yunbio.com/tag/trna" title="查看 tRNA 中的全部文章" target="_blank">tRNA</a></span>没有物种信息，我是直接用里面的9万多条<span class='wp_keywordlink_affiliate'><a href="http://yunbio.com/tag/trna" title="查看 tRNA 中的全部文章" target="_blank">tRNA</a></span>序列拿来<span class='wp_keywordlink_affiliate'><a href="http://yunbio.com/tag/%e6%af%94%e5%af%b9" title="查看 比对 中的全部文章" target="_blank">比对</a></span>吗？tRNA虽然保守，可以这么做吗？我想是否应该有针对拟南芥的tRNA序列呢？</p>
<div class="similarity"><br /><h2>有点相关的问题</h2><ul><li><a href="http://yunbio.com/1027">ncRNA定位</a> (0.500)</li><li><a href="http://yunbio.com/1034">批量提取序列</a> (0.500)</li></ul></div><!-- Tag -->]]></content:encoded>
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		</item>
		<item>
		<title>关于计算SNP位点的频率与正常样本SNP频率的差别除了卡方检验以外还可以用fisher 检验吗</title>
		<link>http://yunbio.com/1836</link>
		<comments>http://yunbio.com/1836#comments</comments>
		<pubDate>Thu, 02 Feb 2012 14:58:40 +0000</pubDate>
		<dc:creator>tiomthy</dc:creator>
				<category><![CDATA[Questions]]></category>
		<category><![CDATA[卡方检验/fisher检验/snp/等位基因频率]]></category>

		<guid isPermaLink="false">http://yunbio.com/1836</guid>
		<description><![CDATA[假设：我有一个位点的在case和control的突变频数如下表 &#160; &#160; AA Aa aa cases 36 100 64 [...]]]></description>
			<content:encoded><![CDATA[<p>
	假设：我有一个位点的在case和control的突变频数如下表</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width: 640px" width="640">
<tbody>
<tr>
<td height="38" style="width: 160px;height: 38px">
<p>
					&nbsp;</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					AA</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					Aa</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					aa</p>
</td>
</tr>
<tr>
<td height="38" style="width: 160px;height: 38px">
<p>
					cases</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					36</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					100</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					64</p>
</td>
</tr>
<tr>
<td height="38" style="width: 160px;height: 38px">
<p>
					controls</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					18</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					84</p>
</td>
<td style="width: 160px">
<p>
					98</p>
</td>
</tr>
</tbody>
<col span="4" />
</table>
<p>
	&nbsp;一般计算其case与control之间的等位差别会使用卡方检验：</p>
<p>
	R语言如下：</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<p>
	allelic_table&lt;- matrix(c(172,120,228,280), ncol= 2)</p>
<p>
	&nbsp;&nbsp; print(allelic _table)</p>
<p>
	&nbsp;&nbsp; chisq.test(allelic_table,correct=FALSE)</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<p>
	而我现在的样本数过于小，是否可以使用fisher 检验呢 ：</p>
<p>
	allelic_table&lt;- matrix(c(172,120,228,280), ncol= 2)</p>
<p>
	&nbsp;&nbsp; print(allelic _table)</p>
<p>
	&nbsp;&nbsp; chisq.test(allelic_table,alternative = &quot;two.sided&quot;)</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<p>
	如果可以使用fisher检验 是不是应该是使用 two sided（双边）检验</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<div class="similarity"></div><!-- Tag -->]]></content:encoded>
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		</item>
		<item>
		<title>关于短序列提交和序列提交数量的问题</title>
		<link>http://yunbio.com/1834</link>
		<comments>http://yunbio.com/1834#comments</comments>
		<pubDate>Thu, 02 Feb 2012 06:50:54 +0000</pubDate>
		<dc:creator>Rick001</dc:creator>
				<category><![CDATA[Questions]]></category>

		<guid isPermaLink="false">http://yunbio.com/1834</guid>
		<description><![CDATA[1、我做活性污泥样品中种群多样性分析，克隆测序得到了三种菌的序列，其中有一种菌的序列片段长度&#60;200bp，提交到NCBI时，对方答复对于&#60;200bp的序列片段不予接收，解释了好半天又提交了一次，结果还是不予接收。请问可否提交到其他的数据库？譬如DDBJ和EMBL。 2、比如一共有50条序列，按97%的相似度分属5个OTU，这50条序列需要全部提交到数据库中还是只提交5个OTU的代表克隆子的序列就可以？（相关的参考文献中好像这两种情况都有） 3、如果不是2中的情况，是不是100%一样的序列可以只提交一条，还是说实验得到多少条序列，全部都得提交（这些序列文章中都会用到）？ 谢谢！ &#160;]]></description>
			<content:encoded><![CDATA[<p>
	1、我做活性污泥样品中种群多样性分析，克隆测序得到了三种菌的序列，其中有一种菌的序列片段长度&lt;200bp，提交到NCBI时，对方答复对于&lt;200bp的序列片段不予接收，解释了好半天又提交了一次，结果还是不予接收。请问可否提交到其他的数据库？譬如DDBJ和EMBL。</p>
<p>
	2、比如一共有50条序列，按97%的相似度分属5个OTU，这50条序列需要全部提交到数据库中还是只提交5个OTU的代表克隆子的序列就可以？（相关的参考文献中好像这两种情况都有）</p>
<p>
	3、如果不是2中的情况，是不是100%一样的序列可以只提交一条，还是说实验得到多少条序列，全部都得提交（这些序列文章中都会用到）？</p>
<p>
	谢谢！</p>
<p>
	&nbsp;</p>
<div class="similarity"></div><!-- Tag -->]]></content:encoded>
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		</item>
		<item>
		<title>如何找出 cis-regulatory motif?</title>
		<link>http://yunbio.com/1832</link>
		<comments>http://yunbio.com/1832#comments</comments>
		<pubDate>Wed, 01 Feb 2012 14:59:15 +0000</pubDate>
		<dc:creator>raymondowf</dc:creator>
				<category><![CDATA[Questions]]></category>
		<category><![CDATA[MOTIF]]></category>

		<guid isPermaLink="false">http://yunbio.com/1832</guid>
		<description><![CDATA[如果有一组微生物基因是 co-expressed (基于 microarray 数据）, 要如何找出它们的cis-regulatory motif? 假设它们都是被同样一个 regulator 控制的。 [...]]]></description>
			<content:encoded><![CDATA[<p>
	如果有一组微生物基因是 co-expressed (基于 microarray 数据）, 要如何找出它们的cis-regulatory motif? 假设它们都是被同样一个 regulator 控制的。</p>
<p>
	我的做法如下，但是不知道对不对？</p>
<p>
	1）找出每一个基因的 upstream sequence.</p>
<p>
	2) 放入 MEME, 设置为：zero or one per sequence; 8 &lt;= width &lt;= 35; search given strand only.</p>
<p>
	3) 以 E&lt; 0.01 选出重要的 motif.</p>
<p>
	4) 通过 MAST 与 所有的 upstream sequence 对比，以确定在第三步骤所获得的重要motif是以上基因的专属。E-value &nbsp;为 &lt; 1.0.</p>
<p>
	疑问：</p>
<p>
	（一）如何确定适合的 E-value?</p>
<p>
	（二）是否只考虑operon的upstream?</p>
<p>
	望高手指教！</p>
<div class="similarity"><br /><h2>有点相关的问题</h2><ul><li><a href="http://yunbio.com/54">关于MEME本地化求助</a> (1.000)</li><li><a href="http://yunbio.com/1176">对FASTA格式的简单处理与统计的Perl程序</a> (1.000)</li></ul></div><!-- Tag -->]]></content:encoded>
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